Kryteria przyjęcia próbek do Pracowni Bakteriologii Ogólnej

  • Próbki do badań powinny być dostarczone w jałowych szczelnie zamkniętych opakowaniach i starannie oznakowane.
  • Pobrane próbki należy dostarczyć do laboratorium niezwłocznie. Jeżeli próbek nie można wysłać do laboratorium w ciągu 24 godzin od pobrania, przechowuje się je w chłodziarce.
  • Podczas transportu należy chronić próbki przed temperaturą przekraczającą 25°C oraz działaniem promieni słonecznych.
  • Próbki nie mogą być dostarczone w stanie zamrożonym.
  • Do próbek należy dołączyć prawidłowo wypełnione zlecenie i/lub dokumentację dodatkową.

Próbki do badań laboratoryjnych w kierunku Salmonella poza Krajowym Programem Zwalczania Salmonella:

  1. Próbka kału:
    • z każdego obiektu/kurnika powinna być pobrana osobna próbka kału o masie minimum 60 g
  2. Wymazy podeszwowe ze ściółki:
    • próbka zbiorcza (2 wymazy podeszwowe)
  3. Wymazy powierzchniowe z zakładów wylęgu drobiu (ZWD) na czystość powierzchni:
    Zgodnie z : Instrukcja Nr 51 z 01.04.1980 r. (Nr WETz.X.4401-. 20/80). Min. Roln.-Dep. Wet. dot. bakteriologicznego badania czystości zakładów wylęgowych oraz
    Dz.U. 2013 poz. 1301, Dz.U. 2014 poz. 1332, z późn. zm. - Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 27 września 2013 r. w sprawie wprowadzenia szczegółowych wymagań weterynaryjnych mających zastosowanie do drobiu i jaj wylęgowych.
    • badanie w kierunku ogólnej liczby bakterii,
    • badanie w kierunku obecności Salmonella
  4. Wymazy powierzchniowe pobierane z jednego obiektu/kurnika:
    • 4 wymazy powierzchniowe z podłoża
    • 4 wymazy powierzchniowe z kątów narożnych
    • 3 wymazy z urządzeń do karmienia
    • 2 wymazy z systemu wentylacyjnego
    • 2 wymazy z magazynu jaj
  5. Wymazy z kloaki/wymazy z odbytu świni i bydła:
    • od każdej sztuki osobny wymaz pobrany do jałowej probówki
    • przypadku wymazów z kolaki z jednego stada można utworzyć próbkę zbiorczą składającą się maksymalnie z 30 wymazów
  6. Próbki od piskląt jednodniowych (wstaw piskląt)
    • wyściółka wraz z mekonium z 10 pojemników transportowych z każdej dostawy (po 25 g z pojemnika) lub
    • wymazy powierzchniowe z dna 10 pojemników transportowych (w przypadku pojemników bez wyściółki) lub
    • pisklęta padłe (w tym również w czasie transportu) nie więcej niż 20 szt.
  7. Zamarłe zarodki:
    • próbka zbiorcza stanowi maksymalnie 10 szt. jaj z zamarłymi zarodkami, nieuszkodzonymi, dostarczonymi na wytłaczankach, starannie opakowanych,
  8. Jaja świeże:
    • 10 szt. jaj świeżych nieuszkodzonych, dostarczonych na wytłaczankach, starannie opakowanych

Próbki w kierunku pałeczek Salmonella Gallinarum (biowar Gallinarum i Pullorum)

  1. W zakładzie utrzymującym drób należy pobrać następujące próbki:
    1. tkanki pobrane po śmierci zwierzęcia, w szczególności z wątroby, jelita, jajnika, jajowodu oraz połączenia krętniczo-kątniczego;
    2. próbki środowiskowe;
    3. wymazy z kloaki żywych ptaków, w szczególności tych, które wydają się być chore lub tych, które wskazano jako wysoce seropozytywne (liczba ptaków od których należy pobrać próbki/liczba próbek środowiskowych – 60)
  2. W wylęgarni należy pobrać następujące próbki:
    1. pisklęta, które się nie wykluły (tj. zarodki zamarłe w skorupce);
    2. kurczęta drugiej kategorii (10 kurcząt drugiej kategorii i 10 kurcząt zamarłych w skorupce z każdego stada pochodzenia obecnego w inkubatorze w dniu pozyskiwania próbek albo 20 kurcząt drugiej kategorii z każdego stada pochodzenia obecnego w klujniku w dniu pozyskiwania próbek);
    3. smółka kurcząt (jedną próbkę zbiorcza puchu i smółki od piskląt z każdego inkubatora);
    4. puch lub pył z wylęgarni oraz ze ścian wylęgarni.

Próbki do badań bakteriologicznych

Padłe ptaki, ssaki, wycinki narządów wewnętrznych, zeskrobiny, wymazy (skóra, uszy, pochwa, nos itp.), kał, kałomocz gołębi, mocz, mleko i inne

Materiał do badań bakteriologicznych powinien być dostarczony do laboratorium:

  • w jak najkrótszym czasie od pobrania, najlepiej w warunkach chłodniczych,
  • w starannie oznakowanym, szczelnie zamkniętym jałowym opakowaniu (np. wymazówka, probówka, strzykawka, płytka Petriego, jałowy woreczek do próbek);

Materiał do badań bakteriologicznych powinien być pobrany w sposób uniemożliwiający zanieczyszczenie mikroflorą postronną.
Próbki powinny być pobrane od zwierząt nieleczonych lub po upływie karencji leku.
Do próbek należy dołączyć prawidłowo wypełnione zlecenie i/lub dodatkową dokumentację.

Nasienie(świeże lub mrożone)

Zgodnie z : Instrukcją nr 49 z 09.12.78 r. Min. Roln.-Dep. Wet. dot. mikrobiologicznego bad.
nasienia buhajów

  1. Nasienie świeże
    • próbki w starannie oznakowanych, szczelnie zamkniętych jałowych opakowaniach, opisane i transportowane w warunkach chłodniczych, w jak najkrótszym czasie od pobrania;
  2. Nasienie mrożone
    • próbki w starannie oznakowanych, szczelnie zamkniętych, jałowych opakowaniach, opisane i zdeponowane w kontenerze z ciekłym azotem;

BRUCELOZA

Zgodnie z: Instrukcją nr 46/2003 Gł. Lek. Wet. z dn. 25.08.2003r. Nr GIW z VII.420/lab-23/2003

Materiał do badań powinien być dobrze zapakowany w szczelnie zamknięte pojemniki, każda próbka powinna znajdować się w oddzielnym pojemniku. Pobrany materiał powinien być dostarczony w jak najkrótszym czasie (24 h ) w stanie schłodzenia 2-4 °C.
Jeśli natychmiastowe dostarczenie poronionego płodu nie jest możliwe, należy pobrać do jałowych pojemników wycinki następujących tkanek: wątroba, śledziona, płuca oraz zawartość żołądka płodu. Następnie pobrane próbki należy przechowywać w temperaturze poniżej - 20°C i w takim stanie dostarczyć do ZHW.

Próbki do badań w kierunku zgnilca amerykańskiego (Paenibacillus larvae)

Plastry lub ich wycinki

  • próbka o powierzchni około 20 cm2 (zawierająca możliwie jak najwięcej komórek z chorym czerwiem – w miarę możliwości bez miodu)
  • każda próbka powinna być oddzielnie zawinięta w papier i oznakowana
  • następnie próbki należy umieścić w kartonowym pudełku zabezpieczającym próbki przed zgnieceniem
  • do pakowania NIE NALEŻY używać materiałów utrudniających przepływ powietrza, które sprzyjają rozwojowi pleśni tj. torby plastikowe, folia aluminiowa, opakowania metalowe i szklane
  • przechowywanie i transport – temperatura poniżej 0°C


Próbki miodu/ zapasów pokarmu

  • próbka około 50g miodu (40 ml)
  • miejscem rekomendowanym do pobrania próbek miodu z pnia pszczelego są plastry z czerwiem
  • próbki należy pobrać jednorazowymi łyżeczkami lub szpatułkami do czystych, plastikowych pojemników, zamykanych szczelnym przykryciem
  • przechowywanie i transport – temperatura pokojowa lub warunki chłodnicze


Próbki pszczół

  • próbka około 100 pszczół
  • pobiera się poprzez strząsanie lub zmiatanie owadów (najlepiej z plastrów z czerwiem)
  • próbki powinny być zapakowane do papierowych kopert lub pojemników
  • przechowywanie i transport – zamrożone lub umieszczone w 70% roztworze etanolu

Próbki do badań w kierunku zgnilca europejskiego (Melissococcus plutonius)

Plastry lub ich wycinki

  • próbka o powierzchni około 20 cm2 (zawierająca możliwie jak najwięcej komórek z chorym czerwiem)
  • każda próbka powinna być oddzielnie zawinięta w papier i oznakowana
  • następnie próbki należy umieścić w kartonowym pudełku zabezpieczającym próbki przed zgnieceniem
  • do pakowania NIE NALEŻY używać materiałów utrudniających przepływ powietrza, które sprzyjają rozwojowi pleśni tj. torby plastikowe, folia aluminiowa, opakowania metalowe i szklane
  • przechowywanie i transport – temperatura poniżej 0°C

Wersja pdf(do wydrukowania)